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动物实验

  • Q1: 实验小鼠标记编号方法有哪些?

    A::1. 染色法:以染色部位、颜色不同来标记区分实验动物;2. 耳孔法:根据打在动物耳朵上的部位和孔的多少,来区分实验动物的方法,可标记三位数之内的号码;3. 烙印法:造成轻微损伤;4.挂牌法:将编好的号码烙印在金属牌上,挂在实验动物颈部、耳部、肢体或笼具上;5. 笼子编号法;6. 断趾编号法 、剪尾编号法、被毛剪号法等。

  • Q2: C57BL/6N小鼠正常体重范围是?

    A:

    雄性
    体重(g) 日龄(天)
    <12 <23
    13-15 24-28
    16-18 29-35
    19-21 36-45
    22-24 45-63
    雌性
    体重 日龄(天)
    <12 <23
    13-15 24-31
    16-18 32-52
    19-21 53-77
    22-24 78-105
  • Q3: 常见的大鼠麻醉方法有哪些?

    A:

    (1)腹腔麻醉 把异氟烷和脂肪乳混合做成乳化异氟烷,腹腔注射,3分钟麻醉,30分钟清醒。

    (2)吸入麻醉 将大鼠封入密封缸中,注入液态吸入麻醉药。

    (3)经口气管插管 腹腔麻醉,四肢仰面固定,上下切牙用丝线系住作牵引,操作者头戴额镜,对面放置好光源,牵出舌头和下切牙丝线一起由左手捏住,上切牙丝线由助手提着或用止血钳夹住用自己的前胸固定,拉动丝线使头部上提和口充分张开,右手持18G或16G套管针,看到声门既可插管。

  • Q4: 小鼠灌胃操作时有哪些要点需要注意?

    A:

    (1)小鼠需要固定好,头和躯体要保持一条直线,并且灌胃时使小鼠成竖直位,头向上;

    (2)灌胃剂量可选0.1 mL/10 g或0.2 mL/10 g,根据实际情况决定,防止小鼠灌胃后俯卧喘息;

    (3)操作前将灌胃针安在注射器上大致测量一下从口腔到胃内的位置(最后一根肋骨后缘)的长度,根据此距离确定插入深度,成年小鼠插入大约3厘米;

    (4)从小鼠的嘴角进针,进去后让灌胃针顺着小鼠的上腭压住它的舌头进入食道,当中有突破感,突破感过后和灌液体时无明显阻力;

    (5)成年小鼠每次最大可灌1.0 mL。

  • Q5: 动物实验的接种途径和方法有哪些?

    A:

    (1)皮内接种:通常以背部皮肤为宜。

    (2)皮下接种:选用腹壁、背部或腹股沟等处。

    (3)肌肉接种:一般选用臀部和大腿部肌肉,若为禽类以胸部肌肉为宜。

    (4)静脉接种:家兔以耳静脉外缘为宜,小鼠和大鼠科注射尾静脉,豚鼠科注射后腿静脉,鸡可注射翅下静脉。

    (5)腹腔接种:常用于小白鼠。

    (6)脑内接种:常用于小白鼠。家兔、豚鼠由于颅骨较硬,需用钢锥先打孔后注射。

    (7)脚掌(垫)接种。

  • Q6: 如何通过形态鉴定大小鼠的日龄?
    A:1日龄鼠仔裸体鲜红,3日龄耳壳露出表皮,4日龄期待疤痕脱落,5日龄能翻身,8日龄能爬行,10日龄能听见声音,9-11日龄全身被白毛且长出门齿,13-15日龄眼皮张开、能跳跃和抓取东西,18日龄后能自行采食和独立生活。
  • Q7: 如何根据体重鉴定日龄?

    A:

    小鼠日龄/d 初生 5 10 15 20 25 30
    小鼠体重/g 1.8 4.0 6.0 11.0 15.0 21.0 21.0
    大鼠日龄/d 初生 10 20 30 40 50 60
    大鼠体重/g 6-7 17-25 35-50 55-90 100-150 150-210 170-240
  • Q8: 如何提升尾静脉注射的成功率?

    A:

    (1)注射前可用50 ℃左右热水浸泡小鼠尾部约1 min左右,见尾静脉明显充盈起来即可;

    (2)拉平拉紧尾部,使得尾部静脉处于一个平面上;若无法完成,可用手托起或踮起部分尾部使尾静脉伸展;

    (3)注射前用酒精涂抹尾部,使尾静脉完全暴露;

    (4)注射时要斜面向上,选择平行与尾静脉的方向刺入,不要有任何角度,刺入约0.5-1cm后退针但不要完全退出,斜面退出约一半时如果针在血管里会有血冒出,然后再次进针,进针距离要短于第一次进针距离,否则会刺穿血管!然后推注液体,此时应该不会感到有很大阻力,可以看到尾静脉血管变白,但是周围组织没有肿,此时顺利完成尾静脉注射;

    (5)不推荐根据推注压力感觉是否进入血管,因为这样会浪费一部分细胞,会导致计数不准。

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